МСАДТ в коррекции адаптивных нарушений, связанных с гнойным процессом
А.Е. Кудаев, Н.К. Ходарева, И.Н. Маслова, И.В. Морылев
(МЦИТ «Артемида», ГБУ РО «ЦВМиР№1», ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Ростовской области», г. Ростов-на-Дону, Россия)
Неспецифические адаптационные (или антистрессорные) реакции организма – понятие, впервые
предложенное Л. Х. Гаркави с соавт [1, 2], в развитие и дополнение концепциистресса Г. Селье. Этим
термином авторы обозначили общую периодическую систему неспецифических реакций организма
(реакций тренировки, спокойной и повышенной активации и переактивации) на действие раздражителей
малой, сверхмалой и средней интенсивности.
Настоящее исследование посвящено изучению роли МСАДТ [3] в коррекции адаптивных реакций,
связанных с гнойным процессом.
Цель работы: определение возможности повышения неспецифической, в том числе,
антибактериальной резистентности с помощью биорезонансных технологий на основе нацеленных
препаратов (нацеленного аутонозода крови животных, нацеленной распотенцированного информационного
аналога антибиотика, нацеленного информационного аналога антибиотика, записанного на аппарате
«Золотое сечение»)
На базе сертифицированной лаборатории отделения токсико-эпидемиологических исследований ФГУЗ
«Центр гигиены и эпидемиологиив Ростовской области» были проведены 2 серии экспериментов на
животных.
1-я серия опытов проведена на 30 крысах-самцах в возрасте 10–11 мес. с массой тела 188 ± 40г. 2-я серия
опытов проведена на 30 мышах-самцах в возрасте 10 мес. с массой тела 27 ± 5 г. В каждой серии животные
были разделены на 4 группы наблюдений:
1. Контрольная группа – 10 животных. Специфическое лечение не проводилось. Крысам через
желудочный зонд вводился физиологический раствор в дозе 2 мл, мышам внутримышечно вводился
физиологический раствор в дозе 0,1 мл.
2. 1-я опытная группа – 10 животных. В лечении использовался инверсный нацеленный нозод крови
животного, изготовленный электронным способом и перезаписанный на физиологический раствор в режиме
«Трансфер». Крысам через желудочный зонд вводился препарат в дозе 2 мл, мышам внутримышечно
вводился препарат в дозе 0,1 мл.
3. 2-я опытная группа – 10 животных. В лечении использовался нацеленный распотенцированный
информационный аналог антибиотика амоксиклав, перезаписанный на физиологический раствор в режиме
«Трансфер». Крысам через желудочный зонд вводился препарат в дозе 2 мл (рис. 1), мышам
внутримышечно вводился препарат в дозе 0,1 мл.
4. 3-я опытная группа – 10 животных. В лечении использовался, нацеленный информационный аналог
антибиотика амоксиклав, записанный на физиологический раствор на аппарате «Золотое сечение». Крысам
через желудочный зонд вводился препарат в дозе 2 мл, мышам внутримышечно вводился препарат в дозе
0,1 мл.
Дизайн исследования
1. Воспроизведение модели гнойной инфекции (перитонита) на фоне вторичного иммунодефицита.
2. Оценка внешнего вида животных (состояние шерстяного покрова, склер глаз).
3. Идентификация общих неспецифических адаптационных реакций по сигнальным критериям
формулы крови [4].
4. Определение тестов реактивности интоксикации клеточных элементов крови.
Для воспроизведения гнойной инфекции использована модель вторичного иммунодефицита у
животных с применением циклофосфана (ЦФ) с последующим введением культуры стафилококка
золотистого. При выборе доз ЦФ и инфекта применены способы их пересчета с учетом особенностей
биотрасформации веществ у различных жи-вотных. Крысам было введено по 6 мг ЦФ внутримышечно,
мышам по 1 мг ЦФ, через сутки – всем животным внутримышечно вводился инфект – по 1х106 микробных
тел суточной культуры стафилококка золотистого. Через 3 часа после введения инфекта у животных
забиралась кровь для исследования, а также приготовления аутонозода крови.
Изготовление информационных препаратов осуществлялось по авторской методике [3] на
оборудовании фирмы «ИМЕДИС» («МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ»), а также на аппарате «Золотое сечение»,
являющемся авторской разработкой МЦИТ «Артемида» (рис. 2.)
Рис. 1. Введение препарата крысе
Рис. 2. Изготовление информационных препаратов
Введение лечебных препаратов проводилось ежедневно, контрольные исследования крови в 1, 4, 5, 6,
7, 8, 11 сутки эксперимента.
Известно, что качественный состав лейкоцитов крови, выраженный формулой крови по Шиллингу, является критерием идентификации общих неспецифических адаптационных реакций организма [2]. Клеточные тесты реактивности и интоксикации рассчитывались по лейкоцитарной формуле крови.
Лимфоцитарный индекс интоксикации по Капитаненко и Дочкину:
ЛИ = лф/н.
Лейкоцитарный индекс интоксикации по Кальф-Калифу:
ЛИИ =(4миел + 3ю + 2п + с)*(пл + 1):(м + лф)*(э + 1),
где э – эозинофилы, б – базофилы, н – нейтрофилы (п – палочкоядерные, с – сегментоядерные), м – моноциты, лф – лимфоциты, мц – миелоциты, пл – плазматические клетки, ю – юные.
Результаты исследования
Оценка адаптационных реакций и показателей эндогенной интоксикации в динамике у крыс
представлена на рис. 3 и табл. 1 и 2.
Рис. 3. Колебательная динамика содержания лимфоцитов в соответствии со шкалой адаптивных реакции у крыс.
Таблица 1
Изменение лейкоцитарного индекса интоксикации по Кальф-Калифу у крыс
Таблица 2
Изменение лимфоцитарного индекса интоксикации по Капитаненко и Дочкину у крыс
Определение структуры адаптационных реакций у крыс в опытных и контрольной группах в исходном
состоянии выявило, что все животные находились в состоянии спокойной активации. Развитие признаков
вторичного иммунодефицита привело к формированию реакций глубокого стресса очень низких уровней
реактивности. На фоне терапии, особенно во 2-й и 3-й опытных группах постепенно к пятому дню лечения
отмечается снижение степени напряженности адаптивных реакций. К 6–7 дню лечения во всех опытных и
контрольной группах вновь произошла смена адаптивных состояний в сторону снижения этажности. Но уже
с 8-х суток лечения на фоне усугубления показателей в контрольной группе в опытных группах отмечено
повышение реактивности с тенденцией выхода из стресса. На 11 сутки лечения – контрольная группа
животных остается в состоянии стресса высокой этажности, во всех опытных группах достигнута реакция
тренировки, особенно выраженная в первой опытной группе.
ЛИИ представляет наиболее точное отражение токсико-дистрофического состояния клеточных систем
крови и опосредованного показателя детоксикационных функций организма. Следовательно, наблюдаемый
уровень динамики индексов интоксикации в опытных группах свидетельствовал о повышении состояния
защитных функций и ослаблении их у крыс в контрольной группе.
Показатели второй серии опытов на экспериментальных животных (мышах) были аналогичными
первой серии наблюдений (табл. 3).
Таблица 3
Изменение лимфоцитарного индекса интоксикации по Капитаненко и Дочкину у мышей
Таким образом, при сопоставлении полученных данных можно выделить следующие особенности
развития общих неспецифических адаптивных реакций у экспериментальных животных, получавших
нацеленные препараты:
– выход из глубокого стрессорного состояния очень низких уровней реактивности, вызванного
вторичным иммунодефицитом;
– формирование антистрессорных реакций средних и высоких уровней реактивности.
В заключение отмечаем:
1. Применение информационной терапии нацеленными препаратами является эффективным методом
коррекции адаптивных нарушений, вызванных гнойным процессом, способствующим повышению
защитных сил организма животных.
2. Обращает внимание специфичность реакций животных на различные энергоинформационные
препараты, а также цикличность реакций у животных, что необходимо использовать при проведении
биорезонансной терапии.
Литература
1. Гаркави Л.Х., Квакина Е.Б., Кузьменко Т.С. Антистрессорные реакции и активационная терапия. –
М.: ИМЕДИС, 1998. – 656 с.
2. Гаркави Л.Х. Активационная терапия. – Ростов н/Д: Изд-во Рост.ун-та, 2006. – 256 с.
3. Кудаев А.Е., Мхитарян К.Н., Ходарева Н.К. Многоуровневая системная адаптивная диагностика и
терапия. – Ростов-на-Дону. Изд. СКНЦ ВШ ЮФУ АПСН, 2009. – 306 с.
4. Гаркави Л.Х., Квакина Е.Б., Кузьменко Т.С., Шихлярова А.И. Антистрессорные реакции и
активационная терапия. Ч.1 – Екатеринбург: «Филантроп», 2002. – 196 с., Ч.2. – 2003. – 336 с.